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Encephalitozoonose

Erreger: Encephalitozoon cuniculi (EC)

(in Arbeit)

Allgemeines

Encephalitozoon cuniculi ist ein einzelliger, sporenbildender, obligat intrazellulärer Parasit, der erstmals 19221) als Ursache für Lähmungen bei Kaninchen beschrieben wurde.

Innerhalb der Gattung Encephalitozoon, die den Microsporidia zugeordnet wird, wurden bei Säugetieren und Vögeln drei Arten beschrieben: Encephalitozoon cuniculi, Encephalitozoon hellem und Encephalitozoon intestinalis. Von E. cuniculi wurden bislang vier verschiedene Stämme (Genotypen) isoliert, deren Bezeichnungen zwar eine Wirtspräferenz zum Ausdruck bringen, die jedoch nicht streng spezifisch sind: Stamm I („rabbit strain“), Stamm II („mouse strain“ – Nagetiere, Blaufüchse, Katzen), Stamm III („dog strain“ – Hunde, Affen, Steppenlemminge) und Stamm IV („human strain“ – Menschen, Katzen, Hunde).2)

Das Wort „encephalo“ bedeutet im Griechischen das Gehirn, „Zoonose“ bezeichnet eine Erkrankung, die vom Tier auf den Menschen übertragen werden kann.

Klinische Manifestationen beim Menschen treten vorwiegend bei immungeschwächten Personen auf, z.B. bei Patienten mit Organtransplantation oder HIV-Infektion.3)

[4)]5)6)7)

Pathophysiologie

[8)]9)

Übertragung

10)[11)]12)13)[14)]

Infektionsdynamik und Diagnostik

[15)][16)][17)]

Serologische Antikörpertests können eine Exposition gegenüber E. cuniculi nachweisen, wobei die gleichzeitige Untersuchung von IgG- und IgM-Antikörpern einen Hinweis auf den Infektionsstatus geben kann (nur IgM – frühe, akute Infektion; IgM und IgG – akute Infektion; nur IgG – latente/chronische Infektion nach Exposition in der Vergangenheit).[18)]

19)

Vorkommen

[20)][21)][22)][23)]

Gannon, 198024) untersuchte u.a. 7 verschiedene Populationen von Hauskaninchen (kommerziell oder privat). In 6 von diesen wurden IgG-Antikörper gegen E. cuniculi mit Prävalenzen von 25 bis 96 % gefunden, die offenbar von den jeweiligen Haltungsbedingungen abhängig waren – Die höchste Infektionsrate stammte aus einer Haltung mit einer Überbelegung von Kaninchen und einer hohen Urinkontamination; die einzige, seronegativ getestete Gruppe stammte aus einer speziell keimfrei gezüchteten Kolonie, die unter strengen Hygienebestimmungen gehalten wurde.

[25)][26)]

Dipineto et al., 200827) sammelten zwischen Januar 2004 und Januar 2006 Blutproben von 125 zufällig ausgewählten Heimkaninchen aus verschiedenen Privatpraxen in Süditalien. 47 Proben stammten von Kaninchen ohne Symptome für EC und 78 Proben von Kaninchen mit typischen, klinischen Symptomen. 84/125 (67%) der Kaninchen – 32/47 (68,1%) und 52/78 (66,7%) – wurden positiv auf Antikörper gegen E. cuniculi getestet, wobei die verwendeten Testmethoden (ELISA und CIA) vergleichbare Ergebnisse lieferten, jedoch keine Differenzierung nach Infektionsstatus erlaubten.

28)

29)

Škrbec et al., 202330) bewerteten retrospektiv Untersuchungsergebnisse von 224 Heimkaninchen in Slowenien. E. cuniculi wurde bei 160 (71,4 %) dieser Kaninchen nachgewiesen (IFA), von denen 120 Kaninchen verschiedene Symptome einer Encephalitozoonose zeigten, während 40 Tiere augenscheinlich unauffällig waren.

31)

Breuninger et al., 202432) untersuchten das Vorkommen von E. cuniculi und E. hellem in Wildkaninchenpopulationen in Süddeutschland (Bayern). Blut- und Organproben (Gehirn, Niere) von 158 Wildkaninchen, gesammelt 2021-2023, wurden mittels serologischer (IFAT) und PCR-basierter Tests analysiert.
Antikörper gegen E. cuniculi wurden bei 24 der 158 (15,2 %) Wildkaninchen nachgewiesen: in 12 Proben sowohl IgM- als auch IgG-Antikörper, in 10 Proben nur IgG-Antikörper und in 2 Proben nur IgM-Antikörper. In 19 Serumproben waren die Titer niedrig, höhere Titer im Bereich von 1:160 bis >1:1280 wurden in fünf Proben gefunden. Die positiv getesteten Tiere stammten aus 7 von 17 in dieser Studie untersuchten Standorte in Bayern.
DNA von E. cuniculi wurde bei 7/158 (4,4 %) und von E. hellem bei 3/158 (1,9 %) Wildkaninchen nachgewiesen.
Bei 1 Wildkaninchen wurde in Gehirn und Niere E. cuniculi Genotyp 1 identifiziert.

Symptome

[33)][34)][35)]36)

Tabelle: Mögliche Symptome der Encephalitozoonose37)38)

Komplex Erkrankungen und Symptome
NervensystemGleichgewichtsstörungen (Kopfschiefhaltung, Nystagmus, Kreisen, Rollen), Ataxie (Störung der Bewegungskoordination), Zittern, Schwächung der Hintergliedmaßen
HarnsystemPolyurie (krankhaft erhöhte Urinausscheidung), Polydipsie (übermäßige Flüssigkeitsaufnahme), Dehydrierung, schlammiger Urin, Schwierigkeiten bei der Urinabgabe
AugenPhakoklastische Uveitis, Katarakt (Linsentrübung)
Magen-Darm-TraktHypomotilität, krankhafter Gewichtsverlust, chronisches Untergewicht

Liatis et al., 202439) (siehe Otitis)

40)

Vorbeugung

Bei Kaninchen gilt Stress als ein Hauptfaktor dafür, dass eine Infektion mit E. cuniculi zum Ausbruch der Erkrankung „Encephalitozoonose“ führt.

3 11 56

1)
Wright, J. H., & Craighead, E. M. 1922. Infectious motor paralysis in young rabbits. The Journal of experimental medicine, 36(1), 135.
2)
Hinney, B., Sak, B., Joachim, A., & Kváč, M. 2016. More than a rabbit's tale–Encephalitozoon spp. in wild mammals and birds. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife, 5(1), 76-87.
3)
Han, B., Pan, G., & Weiss, L. M. 2021. Microsporidiosis in humans. Clinical Microbiology Reviews, 34(4), e00010-20.
4)
Levaditi, C., Nicolau, S., & Schoen, R. 1923. Eine Mikrosporidie, Encephalitozoon cuniculi, als Erreger der epizootischen Encephalitis des Kaninchens. Schweiz. Med. Wochenschr, 6, 149-151.
5)
Flock, U. 2010. Enzephalitozoonose beim Kaninchen – eine retrospektive Auswertung. München: LMU München. Dissertation.
6)
Sieg, J. C. 2014. Enzephalitozoonose beim Kaninchen – eine Therapiestudie. München: LMU München. Dissertation.
7)
Doboși, A. A., Bel, L. V., Paștiu, A. I., & Pusta, D. L. 2022. A review of Encephalitozoon cuniculi in domestic rabbits (Oryctolagus cuniculus)—Biology, clinical signs, diagnostic techniques, treatment, and prevention. Pathogens, 11(12), 1486.
8)
Vivarès, C. P., & Méténier, G. 2001. The microsporidian encephalitozoon. Bioessays, 23(2), 194-202.
9)
Keeling, P. J., & McFadden, G. I. 1998. Origins of microsporidia. Trends in microbiology, 6, 19-22.
10)
Cox, J. C. 1977. Altered immune responsiveness associated with Encephalitozoon cuniculi infection in rabbits. Infection and Immunity, 15(2), 392-395.
11)
Cox, J. C., & Gallichio, H. A. 1978. Serological and histological studies on adult rabbits with recent, naturally acquired encephalitozoonosis. Research in Veterinary science, 24(2), 260-261.
12)
Waller, T. 1979. Sensitivity of Encephalitozoon cuniculi to various temperatures, disinfectants and drugs. Laboratory animals, 13(3), 227-230.
13)
Koudela, B., Kučerová, Š., & Hudcovic, T. 1999. Effect of low and high temperatures on infectivity of Encephalitozoon cuniculi spores suspended in water. Folia Parasitologica, 46(3), 171-174.
14) , 17)
Jeklova, E., Leva, L., Kovarcik, K., Matiasovic, J., Kummer, V., Maskova, J., … & Faldyna, M. 2010. Experimental oral and ocular Encephalitozoon cuniculi infection in rabbits. Parasitology, 137(12), 1749-1757.
15) , 25) , 33)
Lev, L. 1982. Study of experimental and natural Encephalitozoon cuniculi infections in rabbits by 3 serological methods.
16)
Csokai, J., Joachim, A., Gruber, A., Tichy, A., Pakozdy, A., & Künzel, F. 2009. Diagnostic markers for encephalitozoonosis in pet rabbits. Veterinary Parasitology, 163(1-2), 18-26.
18)
Jeklova, E., Jekl, V., Kovarcik, K., Hauptman, K., Koudela, B., Neumayerova, H., … & Faldyna, M. 2010. Usefulness of detection of specific IgM and IgG antibodies for diagnosis of clinical encephalitozoonosis in pet rabbits. Veterinary parasitology, 170(1-2), 143-148.
19)
Doboși, A. A., Paștiu, A. I., Andrei, S., & Pusta, D. L. 2025. Comparative Evaluation of the Serological Methods and the Molecular Genetics Techniques for the Diagnosis of Encephalitozoon cuniculi in Rabbits (Oryctolagus cuniculus). Microorganisms, 13(7), 1478.
20) , 34)
Wilson, J. M. 1979. Encephalitozoon cuniculi in wild European rabbits and a fox.
21)
Cox, J. C., & Ross, J. 1980. A serological survey of Encephalitozoon cuniculi infection in the wild rabbit in England and Scotland. Research in Veterinary Science, 28(3), 396-396.
22) , 35)
Chalupský, J., Vávrá, J., Gaudin, J. C., Vandewalle, P., Arthur, C. P., Guenezan, M., & Launay, H. 1990. Serological evidence of the occurrence of encephalitozoonosis and toxoplasmosis in the European wild rabbit (Oryctolagus cuniculus) in France.
23)
Meyer-Breckwoldt, A. 1996. Epidemiologische und klinische Untersuchungen zur Enzephalitozoonose beim Zwergkaninchen. Hannover: Stiftung Tierärztliche Hochschule Hannover. Dissertation.
24)
Gannon, J. 1980. A survey of Encephalitozoon cuniculi in laboratory animal colonies in the United Kingdom. Laboratory animals, 14(2), 91-94.
26)
Harcourt‐Brown, F. M., & Holloway, H. K. R. 2003. Encephalitozoon cuniculi in pet rabbits. Veterinary record, 152(14), 427-431.
27) , 37)
Dipineto, L., Rinaldi, L., Santaniello, A., Sensale, M., Cuomo, A., Calabria, M., … & Fioretti, A. 2008. Serological survey for antibodies to Encephalitozoon cuniculi in pet rabbits in Italy. Zoonoses and Public Health, 55(3), 173-175.
28) , 36)
Levytska, V., Mushynskyi, А., & Hutsol, Т. 2017. Detection And Diagnosis Of Encephalitozoonosis In Rabbits Under Ukraine-Specific Conditions. Traicon SC.
29)
Mäkitaipale, J., Järvenpää, E., Bruce, A., Sankari, S., Virtala, A. M., & Näreaho, A. 2022. Seroprevalence of Encephalitozoon cuniculi and Toxoplasma gondii antibodies and risk-factor assessment for Encephalitozoon cuniculi seroprevalence in Finnish pet rabbits (Oryctolagus cuniculus). Acta Veterinaria Scandinavica, 64(1), 2.
30) , 38)
Škrbec, M., Dovč, A., Hrženjak, N. M., Slavec, B., Žlabravec, Z., Kočar, N., … & Račnik, J. 2023. Encephalitozoon cuniculi Infection of Domestic Rabbits (Oryctolagus cuniculus) in Slovenia between 2017 and 2021. Pathogens, 12(4), 516.
31)
Doboși, A. A., Paștiu, A. I., Bel, L. V., & Pusta, D. L. 2024. The Prevalence of Encephalitozoon cuniculi in Domestic Rabbits (Oryctolagus cuniculus) in the North-Western Region of Romania Using Serological Diagnosis: A Preliminary Study. Microorganisms, 12(7), 1440.
32)
Breuninger, K., Rinder, M., & Korbel, R. 2024. Occurrence of Encephalitozoon cuniculi and Encephalitozoon hellem in European Wild Rabbits (Oryctolagus cuniculus) in Southern Germany (Bavaria). Animals, 14(19), 2880.
39)
Liatis, T., Makri, N., Czopowicz, M., Richardson, J., Nuttall, T., & Suñol, A. 2024. Otitis media/interna and encephalitozoonosis are the most common causes of head tilt in pet rabbits in the UK: 73 cases (2009‒2020). Veterinary Record, 195(1), e4267.
40)
Duangurai, T., Khamchomphu, N., Dusitkul, K., Tousee, C., Sukmai, Y., Rungnirundorn, T., … & Thengchaisri, N. 2024. Association of Encephalitozoon cuniculi with Clinical Signs and Abnormal Hematologic/Biochemical Changes in Pet Rabbits in Thailand. Animals, 14(19), 2766.